300610
17:29
Jdi ndak usah krm siraman yg nggak jlz yah. Krn lu nggak thu gw, hanya gw yg thu gw….

300610
17:29
Klo lu mw blg gw pngecut, munafik, sbnarnya gw nggak peduli, tp yg gw denger dr ank2 blg lu skit hati ato apalah (sbg tman) krn djauhin…. nah bahkan gw denger yg aneh2.. tp gw nggak peduli trserah mrk mw blg apa n lgpla pdpat sy mw ddengar ato tidak sama saja bg gw ndak ngaruh….

300610
17:29
Sbnrx sy cuek sih, tpi risih juga dpt srman rohani yg nggak jlz bwt siapa,mgkn slh smbung

300610
17:29
Sy juga mw Tanya 2 sms siraman rohani yg lu kirim, saat km bla..bla…bla…, ingatlah bla… bla… bla…, n jgan pernah bla… bla… bla, emang gw bgtu menurut lu.. kykx nggak tuh.
300610

17:30
Sbnrx intix gw cman mw blglht keadaan dr bnyak sisi, ndak usah trlalu subjektif krn yg mnrut lu bener blom tentu bnr bwt org laen…. Klo lo blg brnix cmn dsms… terserah, klo mw gw bcra dpn lo langsung mungkin t’akhir

300610
17:30
If you want one year of prosperity, grow grain. If you want ten years of prosperity, grow tress. And if you want one hundred years of prosperity, grow people. (anonym)

300610
17:31
“the tendeny to avoid problems and emotional suffering inherent in them is the primary basis of all human mental illness”

Pada uji nyala digunakan HCl untuk mensterilkan kawat platina dari kotoran. Kristal ada yang menghasilkan nyala kuning dan adapula yang menghasilkan nyala ungu. Nyala kuning berasal dari ion Na⁼ sedangkan nyala ungu berasal dari ion K⁼. perbandingan warna yang dihasilkan disebabkan karena adanya energy tertentu dari nyala api yang diserap oleh electron-elektron dalam atau logam hingg terjadi eksitasi dan kembalinya electron-elektron ke peringkat dasar dan membebaskan energy nyala yang khas.

Pada pengujian klorida, Kristal diencerkan dengan aquades kemudian ditambahkan dengan HNO₃ dan AgNO₃. Larutan HNO₃ digunakan sebagai katalisator. Adapun persamaan reaksinya yaitu:

NaCl + AgNO₃ ^HNO3 NaNO₃ +    AgCl

Pada pengujian ion nitrat, Kristal terlebih dahulu dilarutkan kemudian ditambahkan FeSO₄ dan H₂SO₄. Menurut teori adanya ion nitrat ditunjukkan dengan adanya cincin coklat pada Kristal.

untungnya aq cepat menyadari semuanya….

awalnya aq memberikan perhatianku hanya karena hatiku tergugah ntuk menolongnya

ku kira dy terkena penyakit ginjal

sebenarnya aq tidak mengetahui dengan pasti apakah dy benar-benar terkena penyakit itu atau hanya karangan temanku saja. yang jelas semenjak ku mengetahui semuanya, akupun slalu ingin didekatnya sampai suatu hal yang buruk hampir menimpaku.

aku sangat bersyukur karena cepat tersadar. entah apa yang terjadi kalau aku mengikuti kemaunnya. mungkin aq tidak punya masa depan yang cerah lagi….

smga semua bs mengambil hikmah dari penjelasannku yang tersurat

harus tegas ntuk katakan tidak pada sesuatu yang bertentangan dengan kata hatimu. jangan pernah mengikuti nafsu karena itu akan meghancurkan masa depanmu, tetap berlidung padaNya dari segala godaan..

“ Kromatografi Lapis Tipis ( Thing Layer Cromatografi, TLC ) “

1. TUJUAN PERCOBAAN

Memisahkan asam – asam amino dalam suatu campuran dengan cara kromatografi lapis tipis.

1. LANDASAN TEORI

Kromatografi adalah suatu metode pemisahan fisik, dimana komponen – komponen yang dipisahkan didistribusikan diantara dua fase, salah satu fasa tersebut adalah soatu laisan stasioner dengan permukaan yang luas, yang lainnya sebagai fluida yang mengalir lembut disepanjang landasan stasioner. Dalam tehnik kromatografi zat – zat terlarut yang dipisahkan bermigrasi sepanjang kolom, atau seperti dalam kromatografi kertasatau lapis tipis, ekivalen fisik kolom, dan tentu saja dasar pemisahan terletak pada laju perpindahan yang berbeda untuk larutan yang berbeda ( Khopkar, 2007 ).

Kromatografi lapis tipis (KLT) dan kromatografi kertas (KKt) adalah metode kromatografi cair yang paling sederhana yang akan disajikan. Karena di sebagian besar laboratorium KKt telah diganti dengan KLT. KLT dapat dipakai dengan dua tujuan. Pertama, dipakai selayaknya sebagai metode untuk mencapai hasil kualitatif, kuantitatif, atau preparative. Kedua, dipakai untuk menjajaki system pelarut dan system penyangga yang akan dipakai dalam kromatografi kolom atau kromatografi cair kinerja tinggi (Gritter, Roy,J.1991:107-108).

Kromatografi lapis tipis ( KLT ) dikembangkan oleh Izmailof dan Schaiber pada tahun 1938. KLT merupakan bentuk kromatografi planar, selain kromatografi kertas dan elektroporesis. Berbeda dengan kromatografi kolom yang mana fasa diamnya diisikan atau dikemas didalamya pada kromatografi lapis tipis, fase diamnya berupa lapisan yang seragam ( uniform )pada permukaan bidang datar yang didukung oleh lempeng kaca, plat amilum atau dapat dikatakan sebagai bentukbentuk terbuka dari kromatogarfi kolom (Anonim, 2009 ).

Pada hakikatnya KLT melibatkan dua peubah, sifat fasa diam atau lapisan,  dan sifat fasa gerak atau campuran pelarut pengembang, fasa diam dapat berupa serbuk halus yang berfungsi sebagai penyangga kromatografi cair – padat, atau berfungsi sebagai penyangga untuk lapisan zat cair ( kromatografi cair – cair ), fasa diam pada KLT serinag disebut penyerap ( Day, 2002: 497 ).

Fasa diam KLT terbuat dari serbuk halus dengan ukuran 5-50 cm, serbuk halusini dapar berupa suatu adsorbs, suatu penukar ion, suatu pengayak molekul atau dapat merupakan penyangga yang dilapisi suatu cairan yang membuat lapisan tipis menjadi bubur ( slury ),yang berair dari serbuk tadi. Zat pengikat seperti gipz, barium sulfat, polivinil ( Soebagio, 2003 ; 87 ).

Pertimbangan untuk memilih pelarut pengembang ( eluen ) umumnya sama dengan pemilihan eluen untuk kromatografi adsorbs pengelusi eluen naik sejalan dengan polaritas missal ( heksana, aseton,alcohol dan air ).Eluen pengembang dapat dapat berupa pelarut tunggalatau campuran pelarut dengan susunan tertentu. Pelaryt – pelarut pengembang harus mempunyaikemurnian yang tinggi. Terdapatnya sejumlah kecil air atau zat pengotor lainnya dapat menghasilkan kromatografi yang tidak diharapkan ( Soebagio, 2003: 88 ).

Deteksi terhadap noda yang timbul pada KLT kadang – kadang lebih mudah dibandingkan kromatografi kertas karena dapat dipakai cara – cara yang lebih umum. Untuk senyawa organic dipakai cara enyemprot lempeng dengan asam sulfat kemudian dipanaskan sampai senyawa seperti orang dan timbul noda – nada hitam. Cara ini adalah cara kualitatif ( Tim dosen, 2010 : 13 ).

Data yang diperoleh dari KLT adalah nilai RF yang berguna untuk identifikasi senyawa. Nilai RF untuk senyawa murni dapat dibandingkan dengan nilai RF  dari senyawa standar. Nilai Rf dapat didefinisikan sebagai jarak yang  ditempuh oleh senyawa ( Underwood, 1986: 186 ).

1. ALAT DAN BAHAN
2. ALAT
   1. Pipa kapiler
   2. Chamber
   3. Penggaris
   4. Pensil
   5. Gunting
   6. Oven
   7. Penjepit kayu
   8. BAHAN
      1. Ninhidrin 0,3 % ( dalam butanol yang mengandung 3 % asam asetat )
      2. Larutan pengelusi A ( butanol : asam asetat : air = 80 : 20 : 20 )
      3. Larutan pengelusu B ( propanol : air = 70 : 30)
      4. Larutan asam amino standar ( alaanin, asam aspartat,asam glutamate dan tirosin)
      5. Campuran x yang akan diuji
      6. Plat KLT
      7. Aquadest
      8. Tissue
3. PROSEDUR KERJA
   1. Menyiapkan larutan asam – asam amino standar, kemudian menotolkanlarutan – larutan x pada 2 lempeng plat KLT yang berbeda
   2. Menotolksan 1 tetes dari laritan asam amino dan senyawa x pada 2 lempemg yang berbeda
   3. Membiarkan penotolan hingga kering, dan meletakkan masing – masing lempeng diatas larutan pengelusi A dan B ( 1 cm bagian bawah lempeng tercelup ) dan membiarkan pengellusi menyerap sampai pada tanda batas atas dari lempeng KLT
   4. Mengeringkan dan menyemprotkan dengan larutan ninhidrin, dan membiarkan beberapa menit, jika tidak timbul warna ( noda ).
   5. Menghitung harga RF dari asam amino dan campuran x yang dianalisis

1. HASIL PENGAMATAN

Keterangan :

A = Asam Glutamat

B = Tirosin

C = Asam Aspartat

D = Alanin

X = Sampel

1. ANALISIS DATA

Pengelusi A

1. Asam Glutamat

Dik      :                  Jarak Noda    = 1,05 cm

Jarak Eluen        = 5,70 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                  Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

1,05 cm

Rf =                        = 0,18

5,70 cm

1. Tirosin

Dik      :                  Jarak Noda    = 1,10 cm

Jarak Eluen        = 5,70 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                  Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

1,10 cm

Rf =                        = 0,19

5,70 cm

1. Asam Aspartat

Dik      :                  Jarak Noda    = 1,95 cm

Jarak Eluen        = 5,70 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                  Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

1,95 cm

Rf =                        = 0,34

5,70 cm

1. Alanin

Dik      :                  Jarak Noda    = 0,90 cm

Jarak Eluen        = 5,70 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                 Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

0,90 cm

Rf =                        = 0,16

5,70 cm

1. Sampel X

Dik      :                  Jarak Noda    = 0,90 cm

Jarak Eluen        = 5,70 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                 Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

0,90 cm

Rf =                        = 0,16

5,70 cm

Pengelusi B

1. Asam Glutamat

Dik      :                  Jarak Noda    = 4,05 cm

Jarak Eluen        = 6,00 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                 Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

4,05 cm

Rf =                        = 0,67

6,00 cm

1. Tirosin

Dik      :                  Jarak Noda    = 3,10 cm

Jarak Eluen        = 6,00 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                 Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

3,10 cm

Rf =                        = 0,52

6,00 cm

1. Asam Aspartat

Dik      :                  Jarak Noda    = 3,35 cm

Jarak Eluen        = 6,00 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                 Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

3,35 cm

Rf =                        = 0,56

6,00 cm

1. Alanin

Dik      :                  Jarak Noda    = 4,30 cm

Jarak Eluen        = 6,00 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                   Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

4,30 cm

Rf =                        = 0,72

6,00 cm

1. Sampel X

Dik      :                  Jarak Noda    = 4,20 cm

Jarak Eluen        = 6,00 cm

Dit   :    Rf = ….?

Peny       :                 Jarak yang ditempuh noda

Rf =

Jarak Eluen

4,20 cm

Rf =                        = 0,70

6,00 cm

VIII.  PEMBAHASAN

Pada percobaan ini dilakukan pemisahan asam amino dalam suatu campuran dengan cara kromatografi lapis tipis ( KLT ). Ada pun asam amino yang dijadikan sebagai standar adalah alanin, asam glutamat, asam aspatat dan tirosin sama halnya dengan kromatografi kertas. Pada percobaan ini didasarkan pada perbedaan kecepatan distribusi suatu komponen diantara dua fase yaitu fase diam dan fase gerak. Dimana fase diamnya berupa satu lapisan lapisan tipis yang memiliki absorban, sedangkan fase geraknya yaitu berupa pengelusi A dan pengelusi B. Tehnik pemisahan ini terdiri dari tiga tahap, yaitu tahap penotolan , tahap pengembangan dan tahap identifikasi. Pada tahap penotolan alanin, asam glutamate, asam aspartat, tyrosin dan sampel x di totolkan pada plat KLT dengan menggunakan pipa kapiler, ini digunakan agar spot tidak menyebar pada saat penotolan sehingga akan memudahkan dalam pengamatan.

Setelah ditotoli asam – asam amino standar dan sampel x, kemudian plat dikeringkan, ini bertujuan untuk menguapkan HCl yang terdapat pada larutan. Setelah kering, plat KLT dielusi dalam chamber sampai batas rambat. Spot harus dijaga agar tidak terendam dalam eluen, karena apabila spoot terendam maka spot tidak akan merembes tetapi akan bercampur dengan eluen. Ketika eluen mencapai batas rambat, kemudian plat dikeluarkan lalu dikeringkan.Selanjutnya plat disemprotkan dengan menggunakan ninhidrin agar noda – noda hasil pemisahan dapat diamati, karena sebelum penyomprotan dengan ninhidrin noda – noda warna belum Nampak, kemudian plat dipanaskan dalam oven hingga timbul warna. Pemanasan ini bertujuan untuk menghilangkan pengelusi yang masih terikat pada lapisan adsorban, akibat hilangnya pengelusi tersebut akan memudahkan terjadinya reaksi antara ninhidrin dengan asam – asam amino serta sampe x.

Adapun reaksi yang terjadi pada saat plat ditotoli oleh asam amino dan di semprot dengan ninhidrin adalah:

1. Asam glutamat
2. Tirosin
3. Asam aspartat
4. Alanin

Adapun penampakan warna pada setiap asam amino adan sampel x yaitu asam glutamate berwarna merah dan memiliki Rf = 0,18, tirosin berwarna merah dan Rf = 0,19, asam aspartat berwarna orange dengan Rf = 0,34, alanin berwarna ungu dengan Rf = 0,16 sedangan sampel x berwarna ungu denngan Rf = 0,16.Dari data tersebut dapat diidentifikasi bahwa sampel X merupakan asam amino dan sampel X yang menggunakan pengelusi B adalah asam glutamate berwarna ungu tua dengan Rf = 0,67, tirosin berwarna ungu muda dengan Rf = 0,52, asam aspartat berwarna ungu dengan Rf = 0,56. Daridata tersebut diketahui bahwa secara kualitatif berdasarkan noda bahwa sampel x merupakan asam glutamate, tetapi secara kualitatif tidak dapat diketahui karena memiliki harga Rf yang berbeda – beda.

1. PENUTUP
2. KESIMPULAN

Setelah melakukan percobaan maka dapat disimpulkan bahwa ;

1. Harga Rf dari asam glutamate pada pengelusi A adalah 0,18 dan pada pengelusi B adalah 0,67
2. Harga Rf dari tirosin pada pengelusi A adalah 0,19 dan pada pengelusi B adalah 0,52
3. Harga Rf dari asam aspartat  pada pengelusi a adalah 0,34 dan pada pengelusi B adalah 0,56
4. Harga Rf dari alanin pada pengelusi A adalah 0,16 dan pada pengelusi B adalah 0,70
5. Harga Rf dari sampel X pada pengelusi A adalah 0,16 sedangakan pada pengelusi B adalah 0,70
6. Sampel X yang merupakan asam amino  glutamate.

1. SARAN

Untuk praktikan selanjutnya, sebaiknya dalam menotolkan asam amino harus harus ditetesi pada plat KLT yang lain atau plat yang tidak dignakan lagi hingga diperoleh penotolan yang sesuai atau penotolan yang lebih kecil.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim. 2010. Pengertian Kromatografi Lapis Tipis. http : // grenn hati.

blogspot. Com/ 2009/ kromatografi-lapis- tipis. Diakses tanggal 26 april

2010

Khopkar. 2007. Konsep Dasar Kimia Analitik. Jakarta : UI; Press.

Soebagio. 2000. Kimia Analitik II. Malang : JICA

Underwood. 1986. Analisis Kimia Kualitatif  Edisi Kelima. Jakarta : Erlangga

Tim Dosen Kimia Analiti. 2010. Penuntun Praktikum Kimia Analitik II. Makassar

jurusan kimia FMIPA UNM.

smoga bermanfaat

” Ion Kompleks Tetraamin Karbonato Nikel III “

II. TUJUAN PERCOBAAN

Mempelajari cara pembuatan, cara pemurnian, dan karakterisasi Ion Kompleks Tetraamin Karbonato Nikel III.

III. LANDASAN TEORI

Suatu ion kompleks dapat didefenisikan sebagai ion yang tersusun dari atom pusat yang mengikat secara koordinasi sejumlah ion atau molekul netral. Ion atau molekul netral sebagai spesies yang terikat pada atom pusat dalam suatu ion kompleks biasanya dinamakan ligan. Spesies ini memiliki satu pasang atau lebih electron bebas dan berperan sebagai donor pasangan elektron pada pembentukan ikatan koordinasi (Tim Dosen Kimia Anorganik, 2010 : 22).

Jika ditinjau dari system asam-basa Lewis, atompusat atau kelompok atom dalam senyawa kompleks tersebut bertindak sebagai asam Lewis. Ikatan yang terjadi antara ligan dan atom pusat merupakan ikatan kovalen koordinasi, sehingga senyawa kompleks tersebut disebut pula senyawa koordinasi. Jumlah ligan yang mengelilingi atom pusat menyatakan bilangan koordinasi. Cabang ilmu kimia yang mempelajari tentang senyawa kordinasi disebut kimia koordinasi. Sifat-sifat senyawa koordinasi dapat diprediksi dari sifat ion pusatnya, Mⁿ⁺ dan ligan, L1, L2, …. Dst. Hal yang sangat spesifik dari senyawa kompleks adalah adanya spesies bagian dari senyawa itu yang tidak berubah baik dalam padatan maupun dalam larutan, walaupun sedikit ada disosiasi. Spesies tersebut dapat berupa nonionic, kation atau anion, bergantung pada muatan penyusun. Jika bermuatan maka sepsis itu disebut ion kompleks atau lebih sederhana disebut spesies kompleks (Ramlawati, 2005 : 1).

Ligan-ligan sederhana, seperti ion-ion halide atau molekul-molekul H₂O atau NH₃ adalah monodentat, yaitu ligan itu terikat pada ion logam hanya pada satu titik oleh penyumbangan pasangan electron menyendiri kepada logam. Namun, bila molekul atau ligan itu mempunyai dua atom, yang masing-masing mempunyai satu pasangan electron menyendiri, maka molekul itu mempunyai dua atom penyumbang, dan adalah mungkin untuk membentuk dua ikatan koordinasi dengan ion logam yang sama ligan seperti itu disebut bidentat (Anonim, 2010).

Dalam artian luas senyawa kompleks adalah senyawa yang terbentuk karena penggabungan dua atau lebih senyawa sederhana yang masing-masingnya dapat berdiri sendiri. Misalnya dalam penggabungan seperti berkut :

A + B           AB

Senyawa AB dapat dianggap sebagai senyawa kompleks  (Svehla, 1985 : 182).

Dalam pelaksanaan analisis anorganik kualitatif banyak digunakan reaksi-reaksi yang menghasilkan pembentukan kompleks. Suatu ion (molekul) kompleks terdiri dari satu atom (ion pusat dan sejumlah ligan) yang terikat erat pada atom (ion) pusat itu. Jumlah relatif komponen-komponen ini dalam kompleks yang stabil nampak mengikuti stokiometri yang sangat tertentu meskipun ini tak dapat ditafsirkan dalam lingkup konsep valensi yang klasik. Atom pusat ini ditandai oleh bilangan koordinasi, satu angka bulat yang menunjukkan jumlat ligan (monodentat) yang dapat membentuk kompleks yang stabil dengan satu atom pusat. Pada kebanyakan kasus, bilangan koordinasi adalah 6 (seperti dalam kasus Fe²⁺, Fe³⁺, Zn²⁺), kadang-kadang 4 (Cu²⁺, Pt²⁺) dan 8 (beberapa ion dari golongan platina) juga trdapat (Rivai, 1994 : 195).

Ion kompleks [Ni(NH₃)₄C₂O₄]⁺ akan dibuat dari senyawa asal garam nikel Ni(NO₃)₂. 6H₂O. Apabila dilarutkan dalam air, garam ini akan ada dalam bentuk ion kompleks  Ni(H₂O)₆ dan ion NO₃^-. Pada prinsipnya ion kompleks tersebut melibatkan proses penggantian ligan H₂O dengan ligan NH₃ yang diikuti dengan oksidasi atom pusat Ni²⁺ menjadi Ni³⁺ (Tim Dosen Kimia Anorganik, 2010; 22).

IV.ALAT DAN BAHAN

1. Alat
2. Gelas kimia 250 mL
3. Gelas kimia 100 mL
4. Gelas ukur 10 dan 50 mL
5. Pembakar spiritus
6. Kaki tiga dan kasa asbes
7. Batang pengaduk
8. Corong biasa
9. Gelas arloji 2 buah

Bahan :

1. Kristal Ni(NO₃)₂.6H₂O
2. Kristal (NH₄)₂CO₃
3. Larutan NH₄OH pekat
4. Larutan H₂O₂ 30 %
5. Kertas saring
6. Etanol (C₂H₅OH)
7. Aquadest
8. Korek api
9. Tissue

V. PROSEDUR KERJA

1. Melarutkan 7,5 gram (0,026 mol) kristal Ni(NO₃)₂.6H₂O dalam 15 mL aquadest hingga diperoleh larutan nikel yang homogen.

2. Mencampurkan 10 gram (0,105 mol) (NH₄)₂CO₃ dalam 30 mL aquadest dalam gelas piala lain kemudian menambahkan 30 mL NH₄OH. Sambil diaduk menuangkan campuran ini kedalam larutan nikel dalam gelas piala pertama.

3. Menambahkan perlahan-lahan 4 mL H₂O₂ 30 %. Selanjutnya memanaskan campuran yang terbentuk hingga volume larutan tinggal kira-kira 40-50 mL. Selama pemanasan menambahkan 2,5 gram (0,025 mol) (NH₄)₂CO₃ untuk penyempurnaan. Perhatian : Menjaga pemanasan sedemikian hingga larutan tidak mendidih.

4. Selanjutnya mendinginkan larutan dan kemudian menyimpan larutan dalam beberapa hari hingga diperoleh Kristal.

5. Memisahkan kristal yang terbentuk dengan cara penyaringan dan mencucinya dengan aquadest.

6. Selanjutnya melakukan pemurnian kristal dengan menambahkan sedikit etanol.

VI. HASI PENGAMATAN

7,5 gram Ni(NO₃)₂.6H₂O (hijau) + 15 ml air (bening)            larutan hijau (larutan 1).

10 gram (NH₄)₂CO₃ (putih) + 30 mL air (bening)             larutan bening + 30 mL  NH₄OH (bening)                 larutan bening + larutan hijau (larutan 1)        larutan biru + 4 mL H₂O₂ 30 %              larutan biru (terdapat gelembung) _dipanaskan larutan biru + 2,5 gram (NH₄)₂CO_{3 dipanaskan} larutan biru muda.

VII. ANALISIS DATA

Dik :   n Ni(NO₃)₂.6H₂O = 0,026 mol

n (NH₄)₂CO₃ = 0,104 mol

Mr [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ = 249 gmol^-1

Dit :    Massa teori =             ?

Penye :

Persamaan reaksinya :

Ni³⁺ +    CO₃^2- +    4NH₃ [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺

Mula  0,026       0,104           0,510                               -

Raksi 0,026        0,026          0,026                               0,026

Sisa     -               0,078          0,406                               0,026

Massa [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ = n x Mr

= 0,026 mol x 249 gmol^-1

= 6,474 gram

VIII. PEMBAHASAN

Pada percobaan [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ ini bertujuan untuk mengetahui cara pembuatan dan pemurnian ion kompleks [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ . Pada pembuatan ion kompleks tersebut digunakan Ni(NO₃)₂.6H₂O  berfungsi sebagai  penyedia atom pusat Ni. Kristal dilarutkan dengan aquadest. Setelah Kristal dilarutkan dengan air, warna larutan menjadi hijau yang menandakan bahwa Kristal Ni(NO₃)₂.6H₂O ini telah terionisasi dalam aquadest tersebut. Kemudian diaduk sehingga mempercepat Kristal larut dalam aquadest (larutan homogen). Adapun reaksinya :

Ni(NO₃)₂.6H₂O    ^H2O [Ni(H₂O)₆]²⁺ +2NO₃^2-

Selanjutnya, melarutkan Kristal (NH₄)₂CO₃ dengan aquadest. Disini (NH₄)₂CO₃ berfungsi sebagai penyedia ligan yaitu ligan NH₃ dan CO₃^2-. Adapun reaksinya :

(NH₄)₂CO_{3           H2O} 2NH₄²⁺ + CO₃^2-

Larutan ini ditambahkan NH₄OH yang berfungsi untuk memperkuat spesi ligan amin. Persamaan reaksinya :

2 NH₄OH + 2NH₄²⁺ 4 NH₃ + 2H⁺ + 4H₂O

Larutan yang terbentuk dicampurkan dengan larutan nikel dengan cara menambahkan larutan ini kedalam larutan nikel. Terjadi perubahan warna setelah larutan dicampurkan. Larutan yang tadinya berwarna hijau menjadi biru. Hal ini menandakan terjadi pendesakan ligan. Yaitu ligan NH₃ mendesak ligan H₂O. Adapun persamaan reaksinya :

[Ni(H₂O)₆]²⁺ + CO₃^2- + 6NH₃ [Ni (NH₃)₄CO₃] + 6H₂O

Selanjutnya larutan ini ditambahkan H₂O₂ untuk mengoksidasi Ni²⁺ menjadi Ni^3+. Hal ini dapat dilihat pada saat penambahan H₂O₂ dalam larutan terbentuk gelembung. Gelembung yang terbentuk ini adalah gelembung O_{2 .} H₂O₂ ini merupakan oksidator sehingga mampu mengosidasi Ni²⁺ menjadi Ni³⁺ . Adapun reaksinya :

[Ni (NH₃)₄CO₃] + 2 H₂O₂ [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ +  O₂ + 2H₂O

Setelah itu, larutan ini dipanaskan dan pemanasan dijaga hingga larutan tidak mendidih. Tujuan dari pemanasan ini adalah untuk menguapkan air yang terkandung dan tujuan pemanasan dijaga hingga tidak mendidih adalah untuk menjaga agar ligan amin tidak ikut menguap bersama air karena apabila ligan aminnya menguap maka tidak akan terbentuk Kristal [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ sehingga pada proses pemanasan, ditambahkan beberapa gram Kristal (NH₄)₂CO₃ sedikit demi sedikit untuk mengganti ligan amin yang dikwatirkan menguap bersama air. Tujuan dari penguapan air adalah untuk mempermudah ligan amin membentuk ion kompleks dengan nikel serta karbonat.

Larutan ini didiamkan dalam beberapa agar  terbentuk Kristal. Tetapi  pada percobaan ini tidak diperoleh Kristal. Hal ini dapat disebabkan oleh beberapa factor diantaranya proses pengadukan yang kurang optimal menyebabkan ligan-ligan dengan atom pusat kurang membentuk kompleks. Selain itu, proses pemanasan yang kurang baik menyebabkan banyaknya ligan amin yang menguap sehingga tidak terbentuk Kristal. Hal lain yang juga dapat mempengaruhi sehingga tidak terbentuk Kristal adalah pengaruh pengenceran NH₄OH.

Berdasarkan teori, bentuk struktur dari Kristal ion kompleks [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ adalah segi empat bipiramida.

NH₃ +

O     C               O                                                    NH₃

Nnn

O                                                  NH₃

NH₃

IX. PENUTUP

A. Kesimpulan

Setelah melakukan percobaan maka dapat disimpulkan bahwa ;

1. Pembuatan ion kompleks [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ dibuat dengan mencampurkan larutan Ni(NO₃)₂.6H₂O dengan larutan (NH₄)₂CO₃ yang telah ditambahkan dengan NH₄OH, kemudian campuran tersebut ditambahkan larutan H₂O₂ 30 % dan dipanaskan hingga volumenya 50 mL. Kemudian larutan didinginkan sehingga diperoleh ion kompleks tetraamin karbonato nikel (III) [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ dalam bentuk kristal.
2. Kristal [Ni (NH₃)₄CO₃]⁺ dapat dimurnikan dengan cara pencucian dengan aquadest serta etanol.

B. Saran

Diharapkan pada percobaan ini, cara pengadukan dan pemanasannya dilakukan dengan baik sehingga dapat memperoleh kristal.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim. 2010. Ion Kompleks. (http : // www. Chem-is-try.org). Diakses pada tanggal 22 Mei 2010. Makassar.

Ramlawati. 2005. Kimia Anorganik Fisik. FMIPA. UNM. Makassar.

Rivai, Harrizul. 1994. Asas Pemeriksaan Kimia. UI-Press. Jakarta.

Svehla, G. 1985. Buku Teks Analisis Anorganik Kualitatif Makro dan Semimikro. Kolgam Media Pustaka. Jakarta.

Tim Dosen Kimia Anorganik. 2010. Penuntun Praktikum Kimia Anorganik. FMIPA UNM. Makassar.

TUJUAN PERCOBAAN Menentukan koefisien distribusi I2 dalam sistem air-kloroform.

LANDASAN TEORI

Mari kita tinjau suatu sistem yang berisi campuran dari beberapa zat kimia yang dapat bereaksi menurut persamaan: V1A1 + V2A2 V3A3 + V4A4 Dengan prinsip kesetimbangan muatan untuk persamaan reaksi di atas dapat dituliskan sebagai berikut: 0=V3A3 + V4A4 – V1A1 – V2A2 Dengan menggunakan suatu perjanjian bahwa koefisien stoikiometri, V1 (dibaca nu i) bertanda negative untuk pereaksi dan bertanda positif untuk hasil reaksi, maka persamaan di atas dapat dinyatakan dengan 0=Σ v1.A1 Untuk menyatakan apabila suatu reaksi berlangsung atau tidak dalam arah yang dituliskan maka harus ditinjau apakah energy Gibbs dari campuran akan naik atau turun. Jika energy Gibbsnya turun dengan berlangsung reaksi, maka reaksi akan berjalan spontan dengan arah yang dituliskan. Reaksi akan terus berlangsung dengan penurunan energy Gibbs sampai mencapai nilai minimum, yakni saat terjadi keadaan kesetimbangan (Rohman dan Muliani, 2004: 126). System redoks iodit (triiodida)-iodida I3- + 2 e 3 I- Mempunyai potensial standar sebesar +0,54 v . karena itu iodine adalah sebuah agen pengoksidasi yang jauh lebih lemah dari pada kalium permanganate, senyawa serium (IV) dan kalium dikromat. Di lain pihak, ion iodide adalah agen pereudksi yang termasuk kuat, lebih kuat, sebagai contah dari ion Fe (II). Dalam proses-proses analitis, iodine dipergunakan sebagai sebuah agen pengoksidasi (iodimetri), dan ion iodide digunakan sebagai agen pereduksi (iodometri). Dapat dikatakan bahwa hanya sedikit saja substansi yang cukup kuat sebagai unsure reduksi untuk dititrasi langsung dengan iodine. Karena itu, jumlah dari penentuan penentuan dari iodometrik adalah sedikit. Namun demikian, banyak agen pengoksidasi yang cukup kuat untuk bereaksi secara lengkap dengan ion iodide, dan aplikasi dari proses iodometrik cukup banyak. Kelebihan dari ion iodide ditambahkan ke dalam agen pengoksidasi yang sedang ditentukan, membebaskan iodine yang kemudian dititrasi dengan larutan natrium tiosulfat. Reaksi antara iodine dengan tiosulfat berlangsung sempurna (Day dan Underwood, 2001: 296). Jika kedalam system dua fasa cair yang tak dapat saling bercampur ditambahkan zat ketiga yang dapat melarut pada keduaanya maka zat ketiga akan terdistribusi diantara kedua fasa tadi dalam jumlah tertentu. Bil larutan jenuh I2 dalam CHCl3 dikocok dengan air dan dalam CHCl3. Setelah tercapai kesetimbangan perbandingan konsentrasi I2 dalam air dan kloroform pada temperature tetap juga tetap. Kenyataan ini akibat langsung hokum termodinamika pada kesetimbangan (Tim Dosen, 2010: 17). Menurut hokum distribusi Nernts, bila ke dalam zat yang tidak saling bercampur dimasukkan solute yang dapat larut dalam kedua pelarut tersebut, maka akan terjadi pembagian solute dengan perbandingan tertentu. Kedua pelarut tersebut umumnya pelruut organic dan air. Dalam praktek solute akan terdistribusi dengan sendirinya kedalam kedua pelarut tersebut setelah dikocok akn dibiarkan terpisah (Anonim, 2010). Tiga metode dasar pada ekstraksi cair-cair adalah ekstraksi bertahap (batch), ekstraksi kontinyu, dan ekstraksi counter current. Ekstraksi bertahap merupakan cara yang paling sederhana. Caranya cukup dengan menambahkan pelarut pengekstraksi yang tidak bercampur dengan pelarut semula, kemudian dilakukan pengocokan sehingga terjadi kesetimbangan konsentrasi zat yang akan diekstraksi pada kedua lapisan, setelah ini tercapai lapisan didiamkan dan dipisahkan. Metode ini sering digunakan untuk pemisahan analitik. Kesempurnaan ekstraksi tergantung pada banyaknya ekstraksi yang dilakukan. Hasil yang baik diperoleh jika jumlah pelarut sedikit (Khopkar, 2008:106). ALAT DAN BAHAN A.Alat 1. Labu erlenmeyer 250 ml 6 buah 7. Pipet tetes 2. Pipet ukur 5 ml 2 buah 8. Botol semprot 3. Gelas ukur 25 ml dan 250 ml 9. Ball pipet 4. Buret 50 ml 2 buah 10. Corong biasa 5. Statif dan klem 3 buah 11. Pengaduk 6. Corong pisah 12. Lap halus B. Bahan 1. Larutan Na2S2O3 0,1 M 2. Larutan jenuh I2 dalam CHCl3 3. Indikator amilum 4. Aquadest 5. Tissue V. PROSEDUR KERJA 1. Mengukur 25 ml larutan jenuh I2 dalam CHCl3 dan memasukkannya dalam corong pisah. 2. Menambahkan 200 ml aquadest dalam corong pisah. 3. Mengocok campuran tersebut selama 60 menit. 4. Mendiamkan larutan tersebut hingga terbentuk 2 lapisan. 5. Memisahkan kedua lapisan tersebut melalui corong pisah. 6. Memipet 5 ml larutan tiap lapisan. Masing-masing lapisan atas 3 kali dan lapisan bawah 2 kali. 7. Menitrasi larutan tersebut dengan Na2S2O3 0,1 N hingga analit bening dengan menggunakan indikator amilum. Mencatat volume titran.

HASIL PENGAMATAN

Titrasi Volume Na2S2O3 0,1 N yang diperlukan (ml) 5 ml lapisan atas 0,70 0,50 0,30 5 ml lapisan bawah 21.90 21,90 22,10

ANALISIS DATA

Pada titrasi I (5 mL I2 dalam H2O) V1 Na2S2O3 = 0,70 mL V2 Na2S2O3 = 0,50 mL V1 Na2S2O3 = 0,30 mL v Na2S2O3 rata-rata=(0,70+0,50+0,30)mL/3 v Na2S2O3 rata-rata=0,50 mL Pada titrasi II (5 mL I2 dalam CHCl3) V1 Na2S2O3 = 21,90 mL V2 Na2S2O3 = 21,90 mL V1 Na2S2O3 = 22,10 mL v Na2S2O3 rata-rata=(21,90+21,90+22,10)mL/3 v Na2S2O3 rata-rata=2,97 mL [Na2S2O3] = 0,1 M [I2] H2O =(v lapisan atas .2,5 x 10-5 mol/mL)/(volume yang dipipet) = (0,50 mL .2,5 .10-5 mol/mL)/(5 mL .o,oo1 ml) = 2,5 . 10-3 mol/ L [I2] CHCl3 = (v lapisan atas .2,5 x 10-5 mol/mL)/(volume yang dipipet) = (21,97 mL .2,5 .10-5 mol/mL)/(5 mL .o,oo1 ml) = 1,09 . 10-1 mol/ L Kd = ([I2] H2O)/([I2] CHCl3 ) = (1,09 .10-1 mol/ml)/(2,,5 .10-3 mol/L) = 43,68

PEMBAHASAN

Pada percobaan ini, yang akan ditentukan adalah koefisien distribusi dari I2 dalam system kloroform-air. Aquades yang ditambahkan dalam ke dalam larutan iod dalam kloroform dikocok. Fungsi pengocokan yaitu mempercepat terjadinya distribusi yang disebabkan karena tumbukan-tumbukan antar partikel campuran yang juga cepat. Pengocokan dilakukan selama satu jam agar I2 dapat terdistribusi secara maksimal. Setelah pengocokan, larutan didiamkan sampai terbentuk dua fase lalu dipisahkan antara lapisan atas dan lapisan bawahnya. Menurut teori, kloroform memiliki berat jenis 1,49 gcm-3 dan air memiliki berat jenis 1,00 gcm-3. Sehingga pada lapisan yang terbentuk, dapat diketahui bahwa lapisan bawah merupakan lapisan iod dalam kloroform sedangkan lapisan atas adalah iod dalam air. Lapisan atas dan lapisan bawah dititrasi dengan menggunakn larutan Na2S2O3 0,1 N. titrasi yang digunakan dalam penentuan koefisien distribusi adalah titrasi iodometri karena iod dalam perobaan berperan sebagai analit. Pada saat mendekati titik akhir titrasi, ditambahkan indicator amilum agar mengetahui titik akhir titrasi. Hal ini dapat diketahui dari perubahan warna yaitu dari biru menjadi bening. Amilum an iod dapat membentuk kompleks dan iod akan terlepas dari kompleksnya membentuk I- pada saat titik akhir titrasi. Penambahan indicator ini pada saat mendekati titik akhir titrasi karena untuk menghindari agar amilum tidak membungkus iod. Adapun persamaan reaksinya adalah: 2S2O32- + I2 S4O62- + 2I- Dari titrasi tersebut diperoleh harga Kd iod dalam air-kloroform sebesar 43,68. Berdasarkan teori, jika harga Kd besar maka solut cenderung terdistribusi ke dalam pelarut organik dibanding dalam air (Soebagio, 2003). Olehnya itu, dari percobaan dapat dikatakan bahwa iodium lebih banyak terdistribusi dalam kloroform dibanding dalam air karena harga Kd-nya besar. Hal ini disebabkan oleh sifat kloroform yang hampir sama dengan sifat I2 dibanding dengan sifat air dengan I2. I2 bersifat semipolar, air bersifat polar dan kloroform yang bersifat semipolar yang telah hampir nonpolar (sifat transisi antara semipolar dengan polar). Olehnya itu, I2 lebih cenderung terdistribusi ke dalam kloroform dibanding ke dalam air.

PENUTUP

Kesimpulan

Harga koefisien distribusi iod dalam sistem air-kloroform yaitu 43,68.

Saran

Dalam percobaan ini, seharusnya cara pengocokan konstan sehingga iod dapat terdistribusi sempurna dengan cepat.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim. 2010. Koefisien Distribusi Iod. http://brown132t.blogspot.com. Diakses pada tanggal 18 April 2010.

Day, R. A. dan Underwood, A.L. 2001. Kimia Analisis Kuantitatif. Jakarta: Erlangga.

Khopkar, S.M. 2008. Konsep Dasar Kimia Analitik. Jakarta: UI-Press.

Rohman, Ijang dan Sri Muliyani. 2004. Kimia Fisik I. Malang: JICA.

Tim Dosen Kimia Fisik. 2010. Penuntun Praktikum Kimia Fisik I. Makassar: Jurusan Kimia FMIPA UNM.